Differenza Tra SYBR Green E Taqman

Sommario:

Differenza Tra SYBR Green E Taqman
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Differenza chiave - SYBR Green vs Taqman

SYBR Green e Taqman sono due metodi utilizzati per rilevare o guardare il processo di amplificazione della PCR in tempo reale. SYBR Green è un metodo basato sulla colorazione intercalante dell'acido nucleico mentre Taqman è un metodo basato sulla sonda di idrolisi. Entrambe le tecnologie sono progettate per generare fluorescenza durante la PCR, che consente alla macchina PCR in tempo reale di monitorare la reazione in "tempo reale". Il metodo SYBR Green viene eseguito utilizzando un colorante fluorescente chiamato SYBR green e rileva l'amplificazione legando il colorante al DNA a doppia elica prodotto. Taqman viene eseguito utilizzando sonde a doppia etichetta e rileva l'amplificazione mediante degradazione della sonda da parte della Taq polimerasi e il rilascio del fluoroforo. Questa è la differenza fondamentale tra SYBR Green e Taqman.

INDICE

1. Panoramica e differenza fondamentale

2. Che cos'è SYBR Green

3. Che cos'è Taqman

4. Confronto affiancato - SYBR Green vs Taqman

5. Riepilogo

Cos'è SYBR Green?

SYBR Green è un colorante fluorescente utilizzato per colorare gli acidi nucleici, in particolare il DNA a doppia elica in biologia molecolare. Il metodo SYBR Green viene utilizzato per quantificare i prodotti della PCR durante la PCR in tempo reale. Una volta che si lega al DNA, il complesso colorante DNA risultante assorbe la luce blu ed emette una luce verde intensa. Accade a causa del cambiamento strutturale che si verifica nella molecola del colorante dopo il legame con il DNA a doppio filamento. Quando la PCR crea sempre più DNA, più molecole di colorante si legano al DNA, generando più fluorescenza. Pertanto, la fluorescenza aumenta con l'accumulo del prodotto PCR. Pertanto, la quantità di prodotto della PCR può essere misurata quantitativamente mediante il rilevamento della fluorescenza SYBR Green.

Il colorante verde SYBR può essere utilizzato anche per l'etichettatura del DNA in citometria e microscopia a fluorescenza. Il bromuro di etidio è stato sostituito con successo da SYBR Green poiché il bromuro di etidio è un colorante cancerogeno con problemi di smaltimento durante la visualizzazione del DNA nell'elettroforesi su gel.

Ci sono vantaggi e svantaggi del metodo verde SYBR. Questo metodo è molto sensibile, economico e facile da usare. Tuttavia, a causa della sua capacità di legarsi a qualsiasi DNA a doppio filamento, il legame aspecifico può portare a una quantificazione eccessiva del prodotto della PCR.

Differenza chiave - SYBR Green vs Taqman
Differenza chiave - SYBR Green vs Taqman

Figura 01: tecnica SYBR Green

Cos'è Taqman?

Taqman è un metodo alternativo a SYBR Green per monitorare il processo di PCR in tempo reale. Questo metodo dipende dall'attività esonucleasica 5 '- 3' dell'enzima Taq polimerasi per degradare le sonde durante l'estensione del nuovo filamento e il rilascio di fluoroforo. In questo metodo vengono utilizzate sonde a doppia etichetta e si basa sull'idrolisi delle sonde. Le sonde sono oligonucleotidi di DNA marcati in modo fluorescente aventi una molecola reporter fluorescente (fluoroforo) all'estremità 5 'e una molecola quencher all'estremità 3'. Sono progettati per legarsi al modello a trefolo singolo sul lato opposto delle ricotture di primer. La Taq polimerasi aggiunge nucleotidi al primer ed estende il nuovo filamento verso le sonde a doppia etichetta. Quando la Taq polimerasi incontra la sonda, l'azione esonucleasica della Taq polimerasi attiva e degrada la sonda. Una volta completata la sintesi del nuovo filamento, la sonda viene sottoposta a completa degradazione e rilascia il fluoroforo. Il rilascio di fluoroforo genera fluorescenza. La molecola Quencher fluorescente spegne in modo efficiente la luce emessa e crea l'output per la quantificazione del prodotto PCR. Il rilascio di fluorofori e la quantità dei prodotti della PCR sono proporzionali. Quindi, la quantificazione può essere facilmente eseguita con il metodo Taqman.la quantificazione può essere eseguita facilmente con il metodo Taqman.la quantificazione può essere eseguita facilmente con il metodo Taqman.

Differenza tra SYBR Green e Taqman
Differenza tra SYBR Green e Taqman

Figura 02: metodo Taqman

Il metodo Taqman viene utilizzato in real time PCR, quantificazione dell'espressione genica, rilevamento di polimorfismi genetici, quantificazione delle delezioni del DNA cromosomico, identificazione batterica, verifica dell'analisi di microarray, genotipizzazione SNP ecc.

Qual è la differenza tra SYBR green e Taqman?

Articolo diff. Al centro prima della tabella

SYBR Green contro Taqman

SYBR Green si basa sul colorante legante il DNA. Taqman dipende dalle sonde di ibridazione e dall'attività di esonucleasi da 5 'a 3' della Taq polimerasi.
Sonde con etichetta fluorescente
Non sono necessarie sonde con etichetta fluorescente. Sono necessarie sonde a doppia etichetta.
Analisi genica multiplex
Non può essere utilizzato per bersagli genici multiplex. Può essere utilizzato per bersagli genici multiplex.
Costo
Questo è meno costoso. Questo è più costoso.
Specificità
Questo è meno specifico e si lega a qualsiasi DNA a doppio filamento Questi sono altamente specifici poiché le sonde rilevano i prodotti di amplificazione specifici.
Efficacia
Questo è meno efficace. Questo è molto efficace.
Applicazione
Viene utilizzato nella PCR in tempo reale, nella visualizzazione del gel di agarosio, nell'etichettatura del DNA, ecc. Questo viene utilizzato in PCR in tempo reale, quantificazione dell'espressione genica, rilevamento di polimorfismi genetici, ecc.

Riepilogo: SYBR Green e Taqman

Taqman e SYBR green sono due metodi utilizzati nella PCR in tempo reale (PCR quantitativa). Entrambi i metodi consentono la quantificazione del prodotto della PCR in modo efficiente e si basano sull'emissione della fluorescenza. Il metodo Taqman utilizza sonde a doppia etichetta per il rilevamento del DNA accumulato, mentre il metodo SYBR Green utilizza un colorante fluorescente. Entrambi questi metodi hanno anche diverse applicazioni nella biologia molecolare.

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